補体固定検査（CFT）

補体固定試験（CFT）は、別の反応系の抗原または抗体を検出するためのインジケーターシステムとして免疫溶血メカニズムを使用するアッセイです。 早くも1906年、Wasermannは有名な華氏反応である梅毒の診断にそれを適用しました。 この伝統的な実験は、感染症の診断と疫学的調査に加えて継続的に改善されており、いくつかの自己抗体、腫瘍関連およびHLAの検出と分析にも使用されています。 基本情報 専門家分類：感染症検査と分類：免疫学的検査 該当する性別：男性と女性が断食を適用するかどうか：断食をしない 分析結果： 通常以下： 通常値： いや 通常以上： マイナス： 通常の値、負、つまり0〜1:10。 ポジティブ： 補体固定テストは、次の側面に適用できます。1感染症の診断。 病原性抗原および対応する抗体の検出。 2他の抗原の検出。 例えば、腫瘍関連抗原、血液中のタンパク質同定、HLAタイピングなど。 3自己抗体検出。 結果は1:10以上の陽性であり、ブルセラ症の診断の一致率は97.96％でした。 ヒント：食べる量を減らして、できるだけ多く食べるようにし、食事を合理的に調整します。 正常値 通常の値は0〜1:10です。 臨床的意義 補体固定テストは、感染症の診断の以下の側面に適用できます。 病原性抗原および対応する抗体の検出。 2他の抗原の検出。 例えば、腫瘍関連抗原、血液中のタンパク質同定、HLAタイピングなど。 3自己抗体検出。 結果は1:10以上の陽性であり、ブルセラ症の診断の一致率は97.96％でした。 注意事項 補体結合試験には、反応の多くの要素、複雑な影響因子、複雑な操作手順、厳格な要件が含まれます。 。 検査プロセス （1）血液の滴定： 1補体1mlを取り、BBS 9mlを加え、1：20、1：30、1：40、1：50、1：60、1：80、1：100、1：200、1：400に希釈し、50を取ります溶血素0.2 ml、溶血素1：100のBBS 9.8 mlを追加し、1：800、1：1600、1：3200、1：6400に希釈し続けます。 2正方形の試験管を取り、0.1mlの異なる濃度の補体を縦に追加し、各列に0.1mlの溶血素を追加し（すべて最高希釈から追加する必要があります）、次にBBS0.2ml、補数、溶血素コントロールチューブにそれぞれ0.3mlのBBSを加え、最後に2％のヒツジ赤血球を各チューブに加えた。 各チューブの総量は0.5 mlで、振って、37°C​​の水槽に30分間入れ、結果を観察しました。 完全溶血補体と溶血素の最高希釈は、それぞれの単位です。 実際の用途では、溶血素は2U（3200÷2 = 1600）で使用され、補体は2.5U（80÷2.5 = 32）で使用されます。 （2）正式なテスト： 1 Vタイプのマイクロプレートで操作し、各検体のテストウェルを作成します。 血清コントロールも。 BBS0.025mlを各ウェルに加えました。 2希釈スティック付きの血清（0.025 ml）を最初のウェルに浸し、回転させて合計8つのウェルで2番目のウェルに移し、1：2から1：256の希釈液を得ます。 3表2に従って各試薬を追加します。 抗体を少量測定するための補体結合アッセイの例が記載されています。 表14-6に従って、さまざまな試薬を徐々に追加しましたが、インキュベーション後、さまざまなコントロールチューブを最初に観察する必要がありますが、これは期待される結果と一致するはずです。 ネガティブおよびポジティブコントロールチューブは明確に溶血および非溶血する必要があります。抗体または抗原コントロールチューブ、テスト対象の血清コントロールチューブ、およびポジティブコントロールとネガティブコントロールのコントロールチューブは完全に溶血する必要があります。 ヒツジ赤血球コントロールチューブでは、自然溶血は起こらないはずです。 補体コントロールチューブは、完全溶解で2U、少量の赤血球を含む完全溶解で1Uを示し、0.5Uは不溶性である必要があります。 たとえば、0.5U補体コントロールの完全な溶解は、補体の量が過剰であることを示します.2Uコントロールチューブが溶血を示さない場合、補体の量が不十分であることを示しているため、結果に影響があり、テストを繰り返す必要があります。 補体固定試験の結果は、試験血清が溶血せず、溶血が陰性であることを示した。 群衆に適していない タブーはありません。 副作用とリスク 関連する合併症や危険性はありません。