백혈구의 차등 수

혈액을 원심 분리하면 표면이 회백색이되며이 부분을 백혈구라고합니다. 형태, 기능 및 발달 및 분화 단계가 다른 이종 혼합 세포 그룹으로, 형태, 기능 및 공급원에 따라 과립구, 림프구 및 단핵구로 나뉩니다. 임상 적 의의를 결정하는 백혈구 수에만 특정 한계가 있으며, 백혈구 분류 및 수와 결합하여 상태를 분석해야합니다. 더 정확합니다. 기본 정보 전문가 분류 : 성장 및 발달 시험 분류 : 혈액 검사 해당 성별 : 남성과 여성의 금식 적용 여부 : 금식 팁 : 적게 먹고 최대한 많이 먹도록하고 합리적으로 식단을 조정하십시오. 정상 값 호중구 막대 모양의 핵 1 % ~ 5 % (0.04 ~ 0.5) × 109 / L, 소엽 핵 50 % ~ 70 % (2 ~ 7) × 109 / L, 호산구 0.5 % ~ 5.0 % ( 0.05 ~ 0.5) × 109 / L; 호염기구 0 % ~ 1 % (0 ~ 0.1) × 109 / L; 림프구 20 % ~ 40 % (0.2 ~ 0.4) × 109 / L; 단핵구 3 % ~ 8 % (0.08 ~ 0.8) × 109 / L. 임상 적 의의 비정상적인 결과 (1) 호중구 감소증은 급성 및 화농성 감염 (가래, 농양, 폐렴, 맹장염, 홍반, 패혈증, 내장 천공, 주홍 열 등), 다양한 중독 (산증, 요독증, 납 중독, 수은 중독)에서 나타납니다. 등), 조직 손상, 악성 종양, 급성 대량 출혈, 급성 용혈. 장티푸스, paratyphoid, 홍역, 독감; 화학 요법, 방사선 요법과 같은 전염병의 발생률을 줄입니다. 일부 혈액 질환 (불 형성 빈혈, 무과립구증, 백혈구 감소증, 골수이 형성 증후군 등), 과장 비대증,자가 면역 질환 등. (2) 호산구 증가증은 알레르기 질환, 피부 질환, 기생충 질환, 특정 혈액 질환, 방사선 조사, 비장 절제술 및 전염병 회복에서 발견됩니다. 장티푸스, paratyphoid, 글루코 코르티코이드의 적용, 부 신피질 자극 호르몬 감소. (3) 림프구 증은 특정 전염병 (백일해, 전염성 단핵구증, 전염성 림프구 증, 수두, 홍역, 풍진, 유행성 이하선염, 바이러스 성 간염, 림프구 백혈병 및 림프구)에서 나타납니다. 종양 등). 많은 전염병, 방사선 병, 면역 결핍 질환 등에서 나타나는 급성기를 줄입니다. (4) 단핵 세포는 결핵, 장티푸스, 감염성 심내막염, 말라리아, 단핵구 백혈병, 칼라-아자르 및 감염성 질환의 회복 기간에서 발견됩니다. (5) 호염기구는 만성 골수성 백혈병, 호염기구 백혈병, 호 지킨 병, 비장 절제술에서 더 흔합니다. 주의 사항 백혈구의 분류는 기술적 요인 및 세포 분포 요인과 같은 요인에 의해 크게 변경되므로 분류 횟수의 분산이 크며 분류에서 많은 부분을 차지하는 호중구 및 림프구의 비율이 일반적으로 분포되어 작은 비율을 차지합니다. 호산구, 호염기구 및 단핵구와 같은 Powson 분포입니다. Rümke et al.에 따르면 백혈구 차분 계수의 95 % 및 99 % 신뢰 한계입니다. 예를 들어, 혈액 샘플이 과립구의 60 % (p) 및 다른 세포의 40 % (q) 인 200 개의 백혈구 분류에 사용되는 경우 p 확률의 표준 오차 (SEp)는 n이고, 계수 된 세포 수는 n입니다. 표 Low95 % 및 High95 % 행과 p60, q40 열, 교집합은 53 및 67을 얻습니다. 즉,이 예의 95 % 신뢰 한계는 53 %이고 최고 값은 67 %이며 동일한 99 % 신뢰 한계는 51 % ~ 69 %. 즉, 동일한 혈액 샘플 또는 동일한 환자의 다른 혈액 샘플이 백혈구로 더 분류 될 때 과립구의 범주 수가 53 %에서 67 %의 범위에있을 확률은 95 %이며 99 %의 가능성 범위는 다음과 같습니다. 51 % ~ 69 % 이 범위를 초과하면 분류 및 계수 오류가 너무 커서 품질 요구 사항을 충족하지 않으므로 심각하게 고려해야합니다. 검사 과정 (1) 슬라이드의 한쪽 끝에 약간의 혈액을 떨어 뜨리고 푸셔를 사용하여 원주를 35 ~ 45 ° 주위로 밀고 머리, 몸 및 꼬리의 얇은 혈액을 구별하기 위해 적절한 양의 공극을 남겨 둡니다. 혈액 필름의 길이는 2.5cm 이상이며 슬라이드의 다른 쪽 끝까지 남은 공간은 약 1cm입니다. 혈액 막이 건조되고 염색됩니다. (2) Wright의 Giemsa 복합 염색 방법 : 염색 랙에 평평한 혈액 샘플, 염색 용액 3 ~ 5 방울 추가, 즉시 혈액 막을 덮고, 약 30 초 후에 완충액 약 5 ~ 10 방울 추가, 유리를 부드럽게 흔들기 정제 또는 혼합물을 가볍게 불어서 염료 용액과 완충 용액을 혼합한다 .5 내지 10 분 후, 염료 용액을 물로 세척하고 현미경 검사를 위해 건조시킨다. (3) 빠른 방법 : 빠른 염색 액체 A와 액체 B를 적절한 크기의 염색 탱크에 넣고 혈액에 혈액 필름을 30 초 동안 담그고 씻은 다음 액체에 30 초 동안 담그고 세척 한 후 현미경 검사를 위해 건조시킵니다. (4) 현미경 검사 : 수막과 꼬리의 교차점을 선택하고 적혈구가 오일 거울과 겹치지 않아야합니다. 검사는 상하 좌우에서 일정한 방향을 가져야하며 혈액 필름의 긴 필름의 양쪽 가장자리를 고려해야합니다. 그렇지 않으면 다양한 세포에 영향을 미칩니다. 탐지 속도. 100 ~ 200 개의 백혈구를 세어 형태에 따라 분류하고 백분율을 찾으십시오. 군중에게 적합하지 않음 시험 적응증이없는 사람은 시험하지 않아야합니다. 부작용 및 위험 1. 감염 : 혈액을 수집 할 때 무균 작동에주의를 기울이고 혈액 수집 현장에서 물 및 기타 부품의 오염을 피하여 국소 감염을 피하십시오. 2, 출혈 : 혈액에 전체 압축 시간, 특히 응고 병증, 출혈 경향이 주어지면 국소 피하 약탈, 타박상 및 부기를 피할 수 있습니다.