urea sérica

La urea (ure) es el producto final del catabolismo proteico de los mamíferos. Se sintetiza en el hígado por la ornitina y se excreta principalmente por los riñones. Debido a que la urea tiene un peso molecular pequeño y es fácil de disolver, y la fuerza de difusión es extremadamente grande, las concentraciones de urea en el líquido cefalorraquídeo, el derrame seroso, la saliva y el sudor son básicamente las mismas. La concentración de urea en sangre se ve afectada principalmente por la función renal y la ingesta de proteínas y el catabolismo. En la actualidad, los métodos más utilizados para determinar la urea en los laboratorios clínicos son el método de la diacetilhidrazina y el método de la tasa de acoplamiento de enzimas. Información básica Clasificación del especialista: clasificación del examen urinario: examen de sangre Género aplicable: si los hombres y las mujeres aplican el ayuno: ayuno Resultados de análisis: Debajo de lo normal: Menos frecuente en la práctica clínica. Principalmente debido a daños en el parénquima hepático, producción reducida. Tales como atrofia aguda del hígado amarillo, cirrosis, hepatitis tóxica, anemia severa. Valor normal: Suero de urea: 2.0-7.1 mmol / L Por encima de lo normal: 1, la enfermedad renal, como la insuficiencia renal aguda, la nefritis crónica, la arteriosclerosis renal, la pielonefritis crónica, la tuberculosis renal, el tumor renal, etc., la insuficiencia renal leve, BUN puede no modificarse. BUN aumentó cuando 60% a 70% de la nefrona efectiva fue dañada. Por lo tanto, la medición de BUN no se puede usar como un indicador de insuficiencia renal temprana, pero tiene un valor especial para el diagnóstico de insuficiencia renal, especialmente uremia, y puede juzgar la condición y estimar el pronóstico. El grado de insuficiencia renal se puede juzgar según los resultados de la medición de BUN. A. La insuficiencia renal compensó el Ccr disminuido, el Cr en sangre fue normal. BUN fue normal o ligeramente elevado (9 mmol / L). C. Ccr 445 μmol / L en fase urémica, BUN> 20 mmol / L. 2, los factores prerrenales o posrrenales causan una reducción significativa en la producción de orina o el cierre urinario, como vómitos severos, diarrea causada por deshidratación, edema, ascitis, insuficiencia circulatoria, así como cálculos del tracto urinario, hipertrofia prostática, tumores, etc. Obstrucción 3, descomposición excesiva de proteínas en el cuerpo, como quemaduras de área grande, cirugía mayor, sangrado gastrointestinal superior, hipertiroidismo y enfermedades infecciosas agudas. En este momento, BUN aumentó, mientras que otras pruebas de función renal fueron generalmente normales. Negativo: Positivo: Recordatorio: la copa de reactivo, la copa de muestra y la copa de reacción deben estar libres de amoníaco, limpias y libres de contaminación ácida y alcalina. Valor normal 1. Método de diacetil-hidrazina 2.0 a 7.1 mmol / L. 2. El método de la tasa de acoplamiento de enzimas es de 2.0 a 7.1 mmol / L. Importancia clínica 1. Incremento: (1) Enfermedades renales como insuficiencia renal aguda, nefritis crónica, arteriosclerosis renal, pielonefritis crónica, tuberculosis renal, tumores renales avanzados, etc., cuando la función renal está levemente alterada, el BUN puede no modificarse. BUN aumentó cuando 60% a 70% de la nefrona efectiva fue dañada. Por lo tanto, la medición de BUN no se puede usar como un indicador de insuficiencia renal temprana, pero tiene un valor especial para el diagnóstico de insuficiencia renal, especialmente uremia, y puede juzgar la condición y estimar el pronóstico. El grado de insuficiencia renal se puede juzgar según los resultados de la medición de BUN. A. La insuficiencia renal compensó el Ccr disminuido, el Cr en sangre fue normal. BUN es normal o ligeramente elevado (<9 mol / L). B. Descompensación de la insuficiencia renal (nitrogenemia o uremia) La Ccr disminuyó significativamente (<0.83ml / s), el Cr en sangre aumentó (> 90 mmol / L), el BUN aumentó moderadamente (> 9 mmol / L) C. Ccr <0.33ml / s en fase urémica, sangre Cr> 445μmol / L, BUN> 20mmol / L. (2) Los factores prerrenales o posrenales causan una reducción significativa en la producción de orina o el cierre urinario, como vómitos severos, deshidratación causada por diarrea, edema, ascitis, insuficiencia circulatoria y cálculos urinarios, hipertrofia prostática, tumores, etc. Obstrucción del camino. (3) Descomposición excesiva de proteínas en el cuerpo, como quemaduras en grandes áreas, cirugía mayor, hemorragia digestiva alta, hipertiroidismo y enfermedades infecciosas agudas. En este momento, BUN aumentó, mientras que otras pruebas de función renal fueron generalmente normales. 2, inferior: clínicamente menos común. Principalmente debido a daños en el parénquima hepático, producción reducida. Tales como atrofia aguda del hígado amarillo, cirrosis, hepatitis tóxica, anemia severa. Los resultados altos pueden ser enfermedades: uremia, precauciones de insuficiencia renal 1, método de diacetil-oxima: (1) La urea no puede reaccionar directamente con la diacetilhidrazina, y el propósito de agregar diacetilhidrazina y ácido fuerte es generar diacetilo que pueda reaccionar con ella. La adición de Fe3 + (o Cd2 +) es para eliminar la interferencia de hidroxilamina formada durante la reacción, y la tiourea puede aumentar la sensibilidad de la reacción en 20 veces. El método introducido en muchos libros anteriores es combinar diacetilhidrazina con tiosemicarbazida. Sin embargo, ambos pueden formar una sustancia amarilla con forma de aguja, que se supera mediante el uso de tiourea en un reactivo ácido. (2) La concentración de ácido se correlaciona positivamente con la absorbancia, por lo que la concentración de ácido debe ser precisa. El diámetro del tubo de ensayo utilizado debe ser lo más uniforme posible en el agua hirviendo, el nivel del líquido debe estar por encima del nivel del líquido en el tubo de ensayo y el tiempo de ebullición debe introducirse en el tubo de ensayo para volver a hervir. Es mejor medir el estándar y el control de calidad cada vez. Al observar los cambios dinámicos de la urea, los pacientes deben mantenerse constantes en la ingesta de proteínas y la sangre se recoge con el estómago vacío. Cuando la muestra no puede analizarse inmediatamente, el suero (o plasma) puede extraerse en una copa de muestra sellada y almacenarse a 4 ° C durante 7 días. Cuando el resultado es mayor de 20 mmol / L, la muestra se cambia a 10 μl y el resultado se multiplica por 2. (3) Aunque este método agrega tiosemicarbazida e iones de cadmio, mejora la intensidad del desarrollo del color y la estabilidad del color hasta cierto punto, pero todavía hay desvanecimiento (aproximadamente 5% por hora), por lo que después de calentar y enfriar el color, Debe ser una comparación de color oportuna. (4) La muestra de 20 μl utilizada debe corregirse antes de su uso. (5) El ácido úrico en plasma (claro), la creatinina, los aminoácidos y otras sustancias que contienen nitrógeno no interfieren con esta prueba, la hemólisis puede dar resultados altos y la ictericia puede dar resultados bajos. (6) El contenido de urea en plasma (transparente) está estrechamente relacionado con el contenido de proteínas de los alimentos. En las dietas altas en proteínas, la cantidad de urea en plasma (transparente) se puede aumentar significativamente, mientras que en las dietas bajas en proteínas, el contenido se reduce significativamente. 2. Método de tasa de acoplamiento de enzimas: (1) El problema más común con este método es la falla del reactivo o la contaminación del sistema de reacción. Los reactivos más inestables son NADH y glutamato deshidrogenasa. En el proceso de análisis, se debe prestar atención a los siguientes aspectos: si se usa plasma, no se pueden usar compuestos fluoroquímicos o anticoagulantes NH4 +. El primero puede inhibir la actividad de la ureasa, mientras que el segundo puede participar en la reacción. (2) La absorbancia del blanco reactivo debe ser mayor que 1.2A, de lo contrario, el NADH se oxida. Para los mismos reactivos e instrumentos, el valor F debe ser relativamente constante bajo la condición de que las condiciones de análisis sean constantes, de lo contrario el reactivo será inválido. (3) No agite el reactivo reconstituido para evitar la desactivación de la enzima. El reactivo debe reconstituirse sin amoniaco. La copa de reactivo, la copa de muestra y la copa de reacción deben estar libres de amoníaco, limpias y libres de contaminación ácida y alcalina, y deben calibrarse cada vez y analizarse con suero de control de calidad. Proceso de inspección Método de diacetilhidrazina: 1. El tubo de ensayo está marcado con un tubo en blanco "B", un tubo de medición "U" y un tubo estándar "S". 2, respectivamente, en el tubo de medición más plasma (transparente) 20 μl, tubo estándar más solución de aplicación estándar 20 μl, tubo en blanco más agua destilada 20 μl. 3. 3 ml de cada reactivo ácido y 3 ml de reactivo de diacetilhidrazina. 4. Mezcle bien, hierva durante 10 minutos, retire y enfríe. 5, longitud de onda de 520 nm, tubo en blanco a cero colorimétrico, leer el tubo estándar y medir la absorbancia del tubo. Nota: 1. La urea no puede reaccionar directamente con la diacetilhidrazina El propósito de agregar diacetilhidrazina y ácido fuerte es generar diacetil que pueda reaccionar con ella. La adición de Fe3 + (o Cd2 +) es para eliminar la interferencia de hidroxilamina formada durante la reacción, y la tiourea puede aumentar la sensibilidad de la reacción en 20 veces. El método introducido en muchos libros anteriores es combinar diacetilhidrazina con tiosemicarbazida. Sin embargo, ambos pueden formar una sustancia amarilla con forma de aguja, que se supera mediante el uso de tiourea en un reactivo ácido. 2. La concentración de ácido se correlaciona positivamente con la absorbancia, por lo que la concentración de ácido debe ser precisa. El diámetro del tubo de ensayo utilizado debe ser lo más uniforme posible en el agua hirviendo, el nivel del líquido debe estar por encima del nivel del líquido en el tubo de ensayo y el tiempo de ebullición debe introducirse en el tubo de ensayo para volver a hervir. Es mejor medir el estándar y el control de calidad cada vez. Al observar los cambios dinámicos de la urea, los pacientes deben mantenerse constantes en la ingesta de proteínas y la sangre se recoge con el estómago vacío. Cuando la muestra no puede analizarse inmediatamente, el suero (o plasma) puede extraerse en una copa de muestra sellada y almacenarse a 4 ° C durante 7 días. Cuando el resultado es mayor de 20 mmol / L, la muestra se cambia a 10 μl y el resultado se multiplica por 2. 3. Aunque este método agrega tiosemicarbazida e iones de cadmio, mejora la intensidad del desarrollo del color y la estabilidad del color hasta cierto punto, pero todavía hay desvanecimiento (aproximadamente 5% por hora). Por lo tanto, después de calentar y enfriar el color, Comparación oportuna de colores. 4. La muestra de 20 μl utilizada debe corregirse antes de su uso. 5. El ácido úrico en plasma (claro), la creatinina, los aminoácidos y otras sustancias nitrogenadas no interfieren con esta prueba, la hemólisis puede dar resultados altos y la ictericia puede dar resultados bajos. 6. El contenido de urea en plasma (transparente) está estrechamente relacionado con el contenido de proteínas de los alimentos. En las dietas altas en proteínas, la cantidad de urea en plasma (transparente) se puede aumentar significativamente, mientras que en las dietas bajas en proteínas, el contenido se reduce significativamente. Método de tasa de acoplamiento de enzimas: La proporción de muestra de reactivo fue 70: 1, 37 ° C, 340 nm, el tiempo de retraso fue de 30 s, y el tiempo de lectura fue de 30 s. Las condiciones de análisis específicas se pueden determinar de acuerdo con las especificaciones del kit y el instrumento, preferiblemente cada vez. Nota: 1. El problema más común con este método es la falla del reactivo o la contaminación del sistema de reacción. Los reactivos más inestables son NADH y glutamato deshidrogenasa. En el proceso de análisis, se debe prestar atención a los siguientes aspectos: si se usa plasma, no se pueden usar compuestos fluoroquímicos o anticoagulantes NH4 +. El primero puede inhibir la actividad de la ureasa, mientras que el segundo puede participar en la reacción. 2. La absorbancia del blanco reactivo debe ser mayor que 1.2A, de lo contrario, el NADH se oxida. Para los mismos reactivos e instrumentos, el valor F debe ser relativamente constante bajo la condición de que las condiciones de análisis sean constantes, de lo contrario el reactivo será inválido. 3. No haga vibrar el reactivo reconstituido para evitar la desactivación de la enzima. El reactivo debe reconstituirse sin amoniaco. La copa de reactivo, la copa de muestra y la copa de reacción deben estar libres de amoníaco, limpias y libres de contaminación ácida y alcalina, y deben calibrarse cada vez y analizarse con suero de control de calidad. No apto para la multitud. Generalmente no hay tabúes. Reacciones adversas y riesgos Generalmente no hay tabúes.