Bakterieller Kohlenhydratstoffwechsel

Der einzige Stickstoffquellentest ist die Fähigkeit, die Verwendung verschiedener Stickstoffquellen (anorganischer Stickstoff) durch Bakterien nachzuweisen. Stickstoff stellt ein wesentliches Nährelement für die mikrobielle Synthese von Zellmaterial dar. Ob Bakterien unterschiedlichen anorganischen Stickstoff (Nitratstickstoff oder Ammoniumstickstoff) für das Wachstum verwenden können, spiegelt die Fähigkeit der Bakterien zur Synthese wider und kann als Indikator für die Identifizierung von Bakterien verwendet werden. Mediumkombination: Dem Basalmedium wird das zu messende Ammoniumammonium (Ammoniumsulfat) oder Nitratstickstoff (Kaliumnitrat) in einer Konzentration von 0,05% bis 0,1% zugesetzt. Wenn die Testbakterien Glucose nicht als Kohlenstoffquelle verwenden können, kann sie durch andere geeignete Kohlenstoffquellen wie Citrat, Acetat oder Mannit in einer Konzentration von 0,2% bis 0,5% ersetzt werden. Nehmen Sie auch eine Blindkontrolle ohne Stickstoffquelle vor (ersetzt durch ein gleiches Volumen steriles Wasser). Stellen Sie den pH-Wert zwischen 7,0 und 7,2 ein und geben Sie die Röhrchen heraus. Jedes Röhrchen ist etwa 4 bis 5 cm hoch. Die Sterilisation bei 112 ° C für 20 bis 30 Minuten erfordert keine Ausfällung des zubereiteten Mediums. Grundlegende Informationen Fachklassifikation: Verdauungsuntersuchung Klassifikation: Biochemische Untersuchung Anwendbares Geschlecht: ob Männer und Frauen Fasten anwenden: Fasten Tipps: Achten Sie auf normale Essgewohnheiten und auf persönliche Hygiene. Normalwert Die Art und der Anteil der Flora im Körper sind normal und der menschliche Körper befindet sich in einem Zustand des dynamischen Gleichgewichts und der Gesundheit. Klinische Bedeutung Es gibt viele Arten von stickstoffhaltigen Verbindungen in der Natur, und sie werden im Allgemeinen in organische Nitride, anorganische Nitride und molekularen Stickstoff eingeteilt. Verschiedene Bakterien haben unterschiedliche Fähigkeiten, stickstoffhaltige Substanzen zu nutzen: Einige Bakterien können Ammoniumchlorid anstelle von Nitratstickstoff verwenden, andere können sowohl Ammonium als auch Nitrat verwenden, was die genetischen Eigenschaften verschiedener Bakterien widerspiegelt. Dem stickstofffreien Grundmedium werden verschiedene Stickstoffverbindungen zugesetzt, um zu beobachten, ob die Bakterien wachsen können, und die Fähigkeit der Bakterien, die Stickstoffquelle zu nutzen, kann beurteilt werden, um die für die symptomatische Medizin geeignete Gattung der getesteten Bakterien zu bestimmen. Abnormale Ergebnisse: Eine Escherichie des extraintestinalen Gewebes oder der Organe wie der Harnröhre, der Gallenwege, der Prostata, der Lunge, der Knochen und anderer Teile der Bauchhöhle kann eine Darminfektion verursachen. Extraintestinale Infektionen treten am häufigsten bei Harnwegs- und eitrigen Infektionen auf. Shigella verursacht bakterielle Ruhr. Menschliche Salmonelleninfektion: 1. Enterisches Fieber 2. Gastroenteritis (Lebensmittelvergiftung) 3. Sepsis 4. Asymptomatische Träger. Verschiedene abnormale Symptome, die durch Klebsiella, Citrobacter, Hafnia und dergleichen verursacht werden. Notwendigkeit, die Menge zu überprüfen: Gastroenteritis, Infektionen der Atemwege, Glomerulonephritis, Infektionen der Harnwege, akute Pharyngitis und andere abnormale Symptome. Vorsichtsmaßnahmen Vor der Untersuchung verboten: Achten Sie auf normale Essgewohnheiten und persönliche Hygiene. Voraussetzungen für die Inspektion: Aktiv mit dem Arzt zusammenarbeiten. Inspektionsprozess Experimentelle Methode: (1) Mediumkombination: Das zu messende Ammoniumammonium (Ammoniumsulfat) oder Nitratstickstoff (Kaliumnitrat) wird dem Grundmedium in einer Konzentration von 0,05% bis 0,1% zugesetzt. Wenn die Testbakterien Glucose nicht als Kohlenstoffquelle verwenden können, kann sie durch andere geeignete Kohlenstoffquellen wie Citrat, Acetat oder Mannit in einer Konzentration von 0,2% bis 0,5% ersetzt werden. Nehmen Sie auch eine Blindkontrolle ohne Stickstoffquelle vor (ersetzt durch ein gleiches Volumen steriles Wasser). Stellen Sie den pH-Wert zwischen 7,0 und 7,2 ein und geben Sie die Röhrchen heraus. Jedes Röhrchen ist etwa 4 bis 5 cm hoch. Die Sterilisation bei 112 ° C für 20 bis 30 Minuten erfordert keine Ausfällung des zubereiteten Mediums. (2) Inokulation und Kultur: Die 18 bis 24 Stunden gewachsenen Bakterienzellen wurden mit der Inokulationsschleife oder der Inokulationsnadel in das obige Medium inokuliert und 3 Tage bei einer geeigneten Temperatur kultiviert. (3) Beobachtung der Ergebnisse: Die Trübung des Impfröhrchens wurde mit dem Kontrollröhrchen verglichen, was positiv war als die Trübung des Kontrollröhrchens. Nicht für die Menge geeignet Unangemessene Menge: Nein. Nebenwirkungen und Risiken Es wurden keine verwandten Komplikationen und Gefahren gefunden.